该染液用于各种脱落细胞的形态学观察。
检验原理:细胞核是由酸性物质组成的,可与碱性染料苏木精结合,被染成蓝紫色;而细胞浆含有碱性物质,可与酸性染料橘黄G以及EA36/EA50染液(主要成分为亮绿和伊红)结合。由于胞浆成分和染料具有不同的亲和力,导致各组分被染成不同的颜色,使得涂片结构清晰,色彩丰富,对比强烈,尤其能显示鳞状上皮不同的角化程度,常用于阴道涂片测定雌激素水平以及宫颈癌的癌前筛查。EA50染液,含有少许冰醋酸成分,比EA36酸度要高,不易沉淀,染色效果更为稳定,请实验者根据具体标本选用不同染液。
巴氏染色液(EA36/EA50)使用说明书
产品:巴氏染色液(EA36/EA50)(套装)
货号:GO-R028/GO-R029
规格:4x100mL(套装)
组分:
苏木精染液(A) | 100mL |
返蓝液(B) | 100mL |
橘黄G染液(C) | 100mL |
EA36/EA50染液(D1/D2) | 100mL |
用途:用于各种脱落细胞的形态学观察。
保存:室温,密封,阴凉通风处避光保存。
有效期:未开封染液,有效期为18个月;开封后染液,建议6个月内使用完。每次用完,请注意及时捏紧瓶盖,以免挥发和变质。
检验原理:细胞核是由酸性物质组成的,可与碱性染料苏木精结合,被染成蓝紫色;而细胞浆含有碱性物质,可与酸性染料橘黄G以及EA36/EA50染液(主要成分为亮绿和伊红)结合。由于胞浆成分和染料具有不同的亲和力,导致各组分被染成不同的颜色,使得涂片结构清晰,色彩丰富,对比强烈,尤其能显示鳞状上皮不同的角化程度,常用于阴道涂片测定雌激素水平以及宫颈癌的癌前筛查。EA50染液,含有少许冰醋酸成分,比EA36酸度要高,不易沉淀,染色效果更为稳定,请实验者根据具体标本选用不同染液。
样本要求:新鲜的组织标本,请尽快用95%酒精固定,以避免细胞变性,影响后续染色观察。
自备材料:系列乙醇、盐酸乙醇分化液、二甲苯或其他透明液、中性树胶等
染色方法:(仅供参考)
1. 涂片前处理
(1) 将新鲜涂片置于95%酒精中固定15分钟以上;
(2) 依次浸入80%,50%乙醇中各30秒,水洗1~2分钟,甩干备用;
2. 染色过程
(1) 将处理好的片子浸入苏木精染液(A)中,3~5分钟,水洗1~2分钟,甩干;
(2) 浸入盐酸酒精分化液中分化数秒,水洗1~2分钟,甩干;
(3) 浸入返蓝液(B)中蓝化数秒,水洗1~2分钟,甩干;
(4) 浸入橘黄G染液中(C),染色1~3分钟,95%的乙醇漂洗10~20秒;
(5) 浸入EA36染液(D1)或EA50染液(D2)中,染色2~5分钟,95%的乙醇漂洗10~20秒;
(6) 无水乙醇脱水;
(7) 二甲苯(或环保透明液)中透明2分钟;
(8) 中性树胶封片,镜检观察。
结果观察(仅供参考):
非角化细胞 | 胞核蓝紫色,胞质淡蓝色或淡绿色 |
角化细胞 | 胞核蓝紫色,胞质淡红色或橘红色 |
红细胞 | 鲜红色或橙红色 |
白细胞 | 胞核蓝紫色,胞质淡蓝或淡绿色 |
上皮细胞 | 胞核蓝紫色,核仁红色,胞质可随分化程度不同,成蓝绿色,粉红色或橘黄色 |
粘液 | 淡蓝或粉红色 |
注意事项:
1. 使用场所应通风。
2. 涂片厚薄要适宜,固定后方可染色。
3. 建议用95%乙醇固定,不建议用高于95%以上乙醇固定,以免染色过深。
4. 苏木精染液(A)表面产生一层氧化膜,底部产生少许结晶沉淀,为硫酸铝钾结晶,属正常现象,使用前除去氧化膜,并使用滤纸过滤。
5. 苏木精染液(A)在染够2000~3000张片子后,应更换新的染液。
6. 苏木精染色随气温和染液的情况而改变,气温较低时,苏木精染色不易着色,可适当延长染色时间;染液以覆盖涂片为宜,染液过少,会因蒸发导致染料沉淀。
7. 分化时间要适度,不宜过长,但如果分化不够,也会导致细胞核颜色过深,胞浆很难上色,可镜检控制,直至细胞核及核内染色质清晰为止(约数秒);分化完成后,请立即用自来水冲洗,不宜久置,时间过长,会分化掉已经结合的苏木素,而导致染色消失。
8. 返蓝也称碱化,返蓝时间要适度。时间偏短,着色不充分,过长或水洗不充分,则细胞核染为深黑色,影响观察效果,每缸过500片,建议更换返蓝液。
9. 橘黄G染色时间要适度,时间过长,会导致EA36/EA50不易上色;橘黄G每缸过1000片,建议更换染液。
10. EA36/EA50使用前,要充分搅拌,染色过程中,提拿,旋转染色架数次。每缸过1000~1800张玻片后建议更换染液。
11. 技术人员操作时,动作应流畅,一气呵成,切忌把上一缸染色液带入下一缸,每缸交替时,要甩干玻片上残存液体;不熟练者,建议用小缸操作,小批量操作,以免浪费标本和染液。
12. 操作人员,要做好个人防护,建议戴手套,穿防护服进行操作。
常见问题:
1.胞浆着色不佳,一般常见的因素
(1) 如果全片内胞浆都淡染,建议延长染色时间,或者更换染液;
(2) 如果胞浆不分色,或均为浅红色,适当增加染色时间,能够部分纠正不分色状况;
(3) 胞浆不分色的另一原因是,EA溶液的pH值不恰当所致,如染色为红色,可加少许磷钨酸溶液纠正;如染色均为蓝色或绿色,可加少许饱和碳酸锂溶液纠正;对于改良EA染液,每100mL染液中,加入2mL冰醋酸,染色效果更佳,使用更持久。
(4) 胞浆染成灰色或紫色,是由于苏木素染色时间过长,或者盐酸酒精分化不佳,经过褪色后,重新苏木素染色,可以纠正;
(5) 由于不同的标本,同样配方的EA溶液可造成偏蓝,偏绿和偏红,对不同的标本,建议使用不同的EA溶液。现在常见的染液一般有EA36,EA50、EA65以及改良EA染液,一般经验认为,EA36和EA50适用于妇科标本,EA65和改良EA染液适用于非妇科标本。建议研究者使用的时候,可结合常规经验,进行小量实验,以确定最佳染液。
2. 胞核着色不佳,一般常见的因素
(1) 胞核着色过浅,一般由于盐酸分化时间过长,或者苏木素染色较短,需要延长苏木素染色时间,或者缩短分化时间,或者延长返蓝(碱化)时间;苏木精染色缸中,定期加入少量新鲜的苏木精染液,或者彻底更换新鲜的染液;
(2) 胞核着色过深,一般由于盐酸浓度不够,可适当加入几滴盐酸以增加浓度;或者碱化(返蓝)时间过长,可缩短时间或者用水充分漂洗。
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