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免疫组化简单操作步骤及操作依据
来源:瀚海拓新 | 作者:瀚海拓新 | 发布时间: 2024-03-19 | 98 次浏览 | 分享到:
免疫组织化学是一种常见的蛋白质测定技术,常用于科研和病理诊断。有好多科研人员,会照着说明书操作,但每一步背后的逻辑是什么,操作依据是什么,可能并不是每个人都很清楚。本文,试图解释每一步操作的背后逻辑,请感兴趣者,参阅。

免疫组化简单操作步骤及简单分析:

特殊试剂:

针对目标分子的一抗(需要针对标本的种属)

免疫组化试剂盒(含三种成分,成分1:内源性过氧化物酶阻断剂, 成分2:反应性增强液,成分3HRP标记的抗小鼠/IgG聚合物)

DAB显色液(需要提前配制:在配液瓶中,加入底物液1mL(试剂2),再加入浓缩DAB溶液50uL(试剂1),混匀,4度避光保存。

常规试剂:

    二甲苯、无水乙醇,95%乙醇、PBS缓冲液,柠檬酸缓冲液,中性树胶,HE染色液,DAPI

设备和耗材:

移液器、恒温箱、修复仪、光学显微镜

免疫组化笔、计时器、孵育盒、染色架、粘附载玻片、盖玻片、洗瓶

操作步骤(石蜡包埋):

(1) 脱蜡和水化:石蜡切片置于新鲜二甲苯中,浸泡10分钟×3次;去除多余的液体后,置于无水乙醇中,浸泡3分钟×3次;去除多余的液体后,置于95%乙醇中,浸泡3分钟×2次;去除多余的液体后,置于75%乙醇中,浸泡3分钟×2次;蒸馏水冲洗1分钟,置于PBS缓冲液中。(问:为什么要脱蜡?答:因为蜡块会封闭抗原位点,影响染色,所以,样本在染色之前,一定要脱蜡。问:脱蜡的方法是什么?答:一般是二甲苯脱蜡。问:用二甲苯处理后,为什么还用乙醇做梯度洗涤(无水-95%-75%),也就是所谓的水化?答:因为二甲苯已经浸透于组织中,但是二甲苯不溶于水,所以,需要酒精把二甲苯溶解,把二甲苯置换出来)。

(2) 抗原修复:参见一抗说明书。一般是:处理好的切片放入盛有柠檬酸盐(PH 6.0)切片盒,放入微波炉,将微波炉调至中高挡(98℃-100℃)并持续加热10分钟,这期间若有水分损失,可直接加入蒸水数次;将切片盒从微波炉取出,自然冷却至室温(问:为什么要做抗原修复?答:由于样本在福尔马林固定的过程中,蛋白多肽发生交联,部分抗原位点被遮蔽,所以我们做抗原修复,目的是充分暴露相应的抗原位点。 问:抗原修复有几种方法?答:一般有两种方法,热修复和酶消化。常见的是,热修复。热修复指缓冲液【EDTA(pH8.0)或枸橼酸钠缓冲液(0.01M,PH=6】被加热煮沸后,片子放于其中,加热10-15分钟左右)

(3) 阻断内源性过氧化物酶加入适量的内源性过氧化物酶阻断剂,室温孵育10分钟;PBS缓冲液冲洗3分钟×3次。问:为什么要做过氧化氢酶阻断?答:因为各种组织中,都含有好多的过氧化氢酶,尤其是红细胞,中性粒细胞等出血的组织,更是富含过氧化氢酶,如果不阻断过氧化氢酶,在显色的时候,过氧化氢酶会和HRP竞争,影响正常显色

(4) 滴加一抗根据组织大小,滴加100μL或适量一抗,37℃孵育60分钟;PBS缓冲液冲洗3分钟×3次问:稀释浓度如何确定?答:一般根据说明书,比如说明书推荐1:10000,我们做一个浓度梯度,1:10000,1:5000,1:15000,进而确定最佳浓度。若批量操作,实在没有时间做浓度梯度摸索,建议稀释浓度略微少于说明书推荐的浓度)

(5) 滴加反应增强液滴加100μL或适量的反应增强液,37℃孵育20分钟;PBS缓冲液冲洗3分钟×3次问:为什么要加反应增强液?答:一抗和抗原结合,信号不是特别稳定,这个时候,加入反应增强液,有助于加强一抗和抗原的结合信号,有利于下一步检测问:反应增强液的主要成分是什么?答;一般是聚乙二醇,胶体金等。)

(6) 滴加增强酶标羊抗小鼠/兔IgG聚合物滴加100μL或适量的增强酶标羊抗小鼠/兔IgG聚合物,37℃孵育20分钟;PBS缓冲液冲洗3分钟×3次。(问:增强酶指的是什么?答:一般指的是HRP或AP,市面上出售的,大部分是HRP)

(7) DAB显色加入适量新鲜配制的DAB或AEC显色液,室温孵育5~8分钟。(问:DAB显色盒子,一般有几种组分?(答:主要是两种,一种是DAB显色液,简称A试剂,另一种是30%过氧化氢,简称B试剂,由于过氧化氢不稳定,所以DAB显色液,一般要求提前配制,避光保存,短时间使用完毕)

(8) 复染自来水冲洗,苏木素染色液孵育20秒;分化、冲洗返蓝,必要时DAPI染细胞核。 (问:免疫组化为什么要复染?答:主要是为了镜下观察方便,复染,主要染细胞核,细胞核蓝紫色,其他阳性反应为棕褐色。问:什么时候用DAPI染色?答:DAPI能够和细胞核中的DNA结合,发出荧光,主要用于免疫荧光染色。)

(9) 脱水:切片依次加入下列试剂中: 50%乙醇1~2分钟  70%乙醇1~2分钟 95%乙醇1~2分钟 95%乙醇1~2分钟 无水乙醇1~2分钟 无水乙醇1~2分钟( 问:脱水和水化什么区别?答:脱水和水化相反,水化从高浓度开始,脱水从低浓度开始,目的是脱去组织中的水分子,以利于长久保存)。

(10) 透明:切片放入二甲苯中,5分钟左右使之透明化(问:免疫组化中,有三次用到二甲苯,一次是蜡块包埋前,一次是脱蜡时,一次是染色后,这三次,目的有何不同?答:第一次使用二甲苯,是利用二甲苯既能溶于乙醇,又能溶解石蜡,目的是石蜡充分浸入组织;第二次,使用二甲苯,是让二甲苯进入组织,使组织透明,更有利于观察)。

(11) 封片:中性树胶滴一点于载玻片上,用盖玻片,轻轻压住,封好的组织切片,放入超净台中,打开抽风,抽几分钟,然后切片晾干,就可永久保存了。

(12) 阅片

(13) 图片定量分析:常用ImageJ软件对图像进行分析(简单介绍;ImageJ是美国NIH开发的,非常强大的软件,做生命科学研究,不使用软件是不行的。)

 


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