众所周知，做分子的离不开酶，做蛋白的离不开抗体。

比如，普通PCR，我们选用Taq酶；

高保真PCR，我们选用pfu酶；

那么荧光定量PCR，我们又该选用什么样的酶？

荧光定量，极其灵敏，理论上可以检测单细胞的基因水平，少至1个拷贝的DNA差异，也能被检测出来。

孔子说过，“物极必反”，一个技术，太灵敏了，也不是个好事。

太灵敏了，一个微小的差异，就会导致一个较大的改变。

比如低温条件下，由引物二聚体引起的非特异性扩增，普通PCR，就不是一个事儿，但在敏感的荧光定量面前，就足以引起统计学意义上的改变。

做荧光定量，首先得有荧光定量PCR仪。

这个仪器出现，也是依赖物理学技术进步。荧光报告基团，能够被荧光定量PCR仪光源激发，机器能够实时采集信号强度。

但是，有了科研设备，也不是万事大吉了。

没有配套设备的试剂出来，设备也只能是皇宫里的太监-中看不中用。

开发试剂，就面临一个问题，选择什么样酶？

我们起初选择传统的Taq酶和pfu酶，但我们发现，由于其高灵敏性，非特异性扩增也被检测出来了。

那么，我们下意识想，能不能再找到另外一个酶？

前面文章介绍到，Taq酶和pfu酶的发现，充满了幸运和坎坷（天鹅都是白色吗，蛋白质高温就会失活吗？Taq 酶就是要与众不同！——长片段高保真PCR的首选-Pfu酶），另起炉灶，重新寻找一个酶，谈何容易!

既然从头再来做不到，我们只能在原来基础上加以改进。

我们试着对传统酶做分子修饰，做结构改良，结果要么是活性被抑制，要么是非特异扩增照样出现。

这个时候，有天才科学家，跳出对分子本身修饰的惯性思维，想出来一个绝妙天才方案：

他把一个抗Taq单克隆抗体和Taq酶混合到了一起，组成混合物，低温条件下，抗体和酶紧紧结合在一起，酶的活性位点被掩盖，酶的活性被抑制；高温条件下，抗体和酶分离，酶的活性位点暴露，酶的活性被激发。

这就是抗体修饰热启动酶。

我看完这个设计，觉得真牛逼, 科研不是非要高大上，一个小小的改进就能促进大大的进步。

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